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Cartouches à fibres creuses Challenge HF®

Dans le monde biopharmaceutique, où la précision est primordiale, chaque milligramme de votre molécule cible est crucial. Nous nous engageons à fournir des solutions de séparation et de purification de pointe, conçues pour garantir la pureté, optimiser la récupération et améliorer l'efficacité opérationnelle, accélérant ainsi votre passage de la R&D à la production commerciale.

    [Applications]
    Récolte, clarification, séparation et purification, concentration, diafiltration, échange de tampon, essais de microfiltration.
    [Produits]
    Anticorps, vaccins, thérapie génique, produits sanguins, réactifs de diagnostic in vitro (DIV), antibiotiques, produits biochimiques, produits naturels (médecine traditionnelle chinoise), exosomes, biologie synthétique, cellules souches
    Cas d'application
    ● Rétention cellulaire/microbienne et culture de perfusion
    ● Culture en suspension à haute densité de cellules de mammifères
    ● Clarification (en remplacement de la centrifugation et de la filtration en profondeur)
    ● Purification du vecteur viral
    ● Concentration et échange de tampon des vecteurs viraux
    ● Concentration et diafiltration des protéines/anticorps
    ● Échange de tampon
    ● Séparation et purification des enzymes et des acides nucléiques
    ● Dessalage, purification et concentration de divers produits biologiques macromoléculaires
    Matériau de membrane
    Les membranes à fibres creuses en polyéthersulfone modifié (mPES) fournies par Challenge IM bénéficient d'améliorations complètes des performances grâce à une technologie de modification exclusive : hydrophilie plus rapide, flux plus élevé, adsorption de protéines non spécifique extrêmement faible, excellente résistance mécanique et stabilité chimique, et niveaux de lixiviation très faibles, assurant ainsi la sécurité et la conformité de vos produits.
    2. MWCO (taille des pores ou MWCO)
    Classées en deux grandes catégories en fonction de la taille des pores : les membranes d'ultrafiltration normalisées par le seuil de coupure de poids moléculaire (MWCO, 1-750KD) et les membranes de microfiltration normalisées par la taille des pores (0,1-1 μm).
    Perméation : La taille des pores ou le seuil de coupure moléculaire (MWCO) doit être au moins 5 à 10 fois supérieure à celle de la molécule cible.
    Rétention : La taille des pores ou le seuil de coupure moléculaire (MWCO) doit être de 1/3 à 1/5 du poids moléculaire de la molécule cible.
    Diamètre intérieur de la fibre
    Challenge IM propose des cartouches à fibres creuses avec des diamètres intérieurs de fibres standard de 0,5 mm et 1,0 mm. La réduction du diamètre intérieur des fibres augmente la densité de garnissage de la membrane par unité de filtre, ce qui accroît la surface de la membrane et le débit, mais peut augmenter les effets de cisaillement lors de la circulation du fluide.
    Les filtres de 1,0 mm sont principalement utilisés pour le traitement de matériaux à haute densité cellulaire, à forte teneur en matières solides ou à viscosité élevée.
    Les filtres de 0,5 mm peuvent être utilisés dans la plupart des applications pour améliorer l'efficacité du transfert de masse.
    Longueur effective
    La longueur effective des fibres à l'intérieur des cartouches à fibres creuses détermine la longueur du trajet d'écoulement, qui est liée à des paramètres tels que la chute de pression à travers le filtre (influençant la force motrice de la filtration).
    Pour une transposition d'échelle directe, la longueur effective doit rester constante. Toute modification de cette longueur altère significativement la perte de charge et les champs d'écoulement internes, empêchant ainsi une transposition d'échelle linéaire. En général, pour le traitement de fluides très encrassants ou à haute viscosité, il est recommandé d'opter pour des filtres de longueur effective plus courte.
    Force de cisaillement
    Le débit de circulation des cartouches à fibres creuses doit être réglé en tenant compte de la tolérance au cisaillement du fluide de procédé. Il est généralement de 2 000 à 10 000 s⁻¹, ce qui est bien inférieur à la force de cisaillement générée par la turbulence à la surface de l’écran des cassettes membranaires.
    Pour les fluides courants : contrôle recommandé entre 4 000 et 6 000 s⁻¹. Fluides sensibles au cisaillement (ex. : lentivirus, grosses protéines exprimées par des cellules animales, LNP, etc.) : il est recommandé de réduire le cisaillement à environ 2 000 s⁻¹. Fluides tolérants au cisaillement (ex. : petites protéines exprimées par des bactéries) : le cisaillement peut être augmenté jusqu’à 8 000 à 10 000 s⁻¹.
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